Suplementación de cromo sobre concentraciones séricas de glucosa, cortisol e insulina en equinos deportistas
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El objetivo del estudio fue determinar como la suplementación de cromo afecta el rendimiento de caballos deportivos, se evaluó los posibles efectos de dos fuentes de suplementos de cromo orgánico en caballos atléticos. Se evaluaron 15 equinos deportivos, raza Argentina Saddle, de 12 a 15 años, alimentados con concentrado, pasto de centeno y heno de alfalfa. Fueron divididos en tres grupos experimentales:i) el grupo de control recibió dieta basal sin suplementación, ii) dieta basal suplementada con 20 mg de cromo en forma de levadura enriquecida por 30 días; y iii) dieta basal suplementada con 20 mg de cromo en forma de tripicolinato de cromo por 30 días. Después, se realizó una prueba submáxima de esfuerzo y posterior una evaluación de niveles sanguíneos de glucosa, cortisol e insulina. El análisis estadístico del nivel de glucosa no mostró diferencias significativas para ninguno de los tratamientos (P> 0.05), pre y post ejercicio. El cortisol plasmático fue similar entre el tratamiento pre-ejercicio, la levadura enriquecida con cromo y el cromo orgánico, disminuyeron el nivel de cortisol en sangre post ejercicio (P <0,05). La concentración plasmática de insulina se vio influenciada por la suplementación con cromo después del ejercicio intensivo, los resultados demostraron que el nivel de insulina en sangre fue mayor en los caballos que no recibieron suplementación (P <0.01) en comparación con los grupos que recibieron suplementación de cromo. La suplementación con cromo orgánico en caballos deportivos no modificó la glucosa plasmática, pero si la concentración sanguínea de cortisol e insulina.
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Finno CJ, McKenzie E, Valberg SJ, Pagan J. Effect of fitness on glucose, insulin and cortisol responses to diets varying in starch and fat content in Thoroughbred horses with recurrent exertional rhabdomyolysis. Equine Vet J. 2010; 42(SUPPL. 38):323-8. DOI:10.1111/j.2042- 3306.2010.00199.x
Bamford NJ, Potter SJ, Harris PA, Bailey SR. Breed differences in insulin sensitivity and insulinemic responses to oral glucose in horses and ponies of moderate body condition score. Domest Anim Endocrinol. 2014;47(1):101-7. DOI: 10.1016/j.domaniend.2013.11.001
Chameroy KA, Frank N, Elliott SB, Boston RC. Effects of a supplement containing chromium and magnesium on morphometric measurements, resting glucose, insulin concentrations and insulin sensitivity in laminitic obese horses. Equine Vet J. 2011;43(4):494-9. DOI: 10.1111/j.2042-3306.2010.00302.x
Pagan JD. Micromineral Requirements in Horses. En: Advances in Equine Nutrition III. Nottringham, UK; 2000. p. 317-26. http://www.mitchellplainfarm. com/uploads/2/9/4/4/2944849/pagan_ micromineral_requirements.pdf
Pagan JD, Pagan JOED, Jackson SG, Duren SE. the Effect of Chromium Supplementation on Metabolic Response to Exercise in Thoroughbred Horses. Proc Equine Nutr Symp. 1995; 96-101. https://ker.com/wp- content/uploads/The-Effect-of-Chromium- Supplementation-on-Metabolic-Response-to- Exercise-in-Thoroughbred-Horses.pdf
Frank N, Tadros EM. Insulin dysregulation. Equine Vet J. 2014; 46(1):103-12. DOI: 10.1111/ evj.12169
Almeida MLM, Feringer WH, JÚNIOR, Carvalho JRG, Rodrigues IM, Jordão LR, et al. Intense exercise and aerobic conditioning associated with chromium or L-Carnitine supplementation modified the fecal microbiota of fillies. PLoS One. 2016; 11(12):1-21. https://journals.plos. org/plosone/article?id=10.1371/journal. pone.0167108
Shade K-TC, Platzer B, Washburn N, Mani V, Bartsch YC, Conroy M, et al. A single glycan on IgE is indispensable for initiation of anaphylaxis. J Exp Med. 2015;212(4):457-67. DOI: 10.1084/ jem.20142182
Bröjer J, Lindåse S, Hedenskog J, Alvarsson K, Nostell K. Repeatability of the combined glucose-insulin tolerance test and the effect of a stressor before testing in horses of 2 breeds. J Vet Intern Med. 2013;27(6):1543-50. DOI: 10.1111/jvim.12172
Bertin FR, de Laat MA. The diagnosis of equine insulin dysegulation. EQUINE Vet J. 2017;49(10):3218-21. DOI: 10.1111/evj.12703
Morgan RA, Mcgowan TW, Mcgowan CM. Prevalenceandriskfactorsforhyperinsulinaemia in ponies in Queensland, Australia. Aust Vet J. 2014; 92(4):101-6. DOI: 10.1111/avj.12159
Harris PA, Harris RC. Nutritional ergogenic aids in the horse - uses and abuses. Conf equine Sport Med Sci. 1998; 491-508. https://www. yumpu.com/en/document/view/50834989/ nutritional-ergogenic-aids-in-the-horse- kentucky-equine-research
Jacob SI, Geor RJ, Weber PSD, Harris PA, McCue ME. Effect of age and dietary carbohydrate profiles on glucose and insulin dynamics in horses. Equine Vet J. 2017;(10):3218- 21. DOI: 10.1111/evj.12745
Kaneko JJ, Harvey JW, Bruss ML. Clinical Biochemistry of Domestic Animals. En: Clinical Biochemistry of Domestic Animals. 6.a ed. Davis, California I.; 1997. p. 661, 890-4.
Mowat DN, Chang X, Yang WZ. Chelated chromium for stressed feeder calves. Can J Anim Sci. 1993; 73:49-55.https://cdnsciencepub. com/doi/pdf/10.4141/cjas93-004
Fonseca LA, Girardi FM, Coelho CS, Barioni G, Rangel VB, Gonçalves RC. Influence of chromium supplementation on energy metabolism in horses used in policing activity. Arq Bras Med Veterinária e Zootec. 2011;63(5):1175-80. DOI: 10.2337/dc06-0996
Burton JL, Roberts D, Montaldi M, Novick PJ, De Camilli P. A mammalian gunanine- nucleotide-releasing protein enhances function of yeast secretory protein Sec4. Nature. 1993; 361:464-7. DOI: 10.1038/361464a0
Chang X, Mallard BA, Mowat DN. Effects of chromium on health status, blood neutrophil phagocytosis and in vitro lymphocyte blastogenesis of dairy cows. Vet Immunol Immunopathol. 1996; 52:37-52. DOI: 10.1016/0165-2427(95)05539-8
Gobesso AA de O, Etchichury, Mariano Tosi H. Resposta plasmática de glicose e insulina em EQÜINOS alimentados com diferentes fontes de amido. Brazilian J Vet Res Anim Sci. 2009;46(4):324-31. https://www.teses.usp.br/ teses/disponiveis/74/74131/tde-05052014- 164429/publico/ME8191732COR.pdf
Kedzierski W, Cywi?ska A, Strzelec K, Kowalik S. Changes in salivary and plasma cortisol levels in Purebred Arabian horses during race training session. J Anim Sci. 2014;(85):313. https://www. ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4852239/
Galindo CA, Martins CB, Comide LM, de Queiroz A, Correa J. Alteraciones metabólicas durante entrenamiento en equinos de la Raza Pura Sangre Árabe. Rev Med Vet (Bogotá). 2007;(13):77-82. https://ciencia.lasalle.edu.co/ cgi/viewcontent.cgi?article=1117&context=mv
Ott EA, Kivipelto J. Influence of chromium tripicolinate on growth and glucose metabolism in yearling horses. J Anim Sci. 1999; 77:3022-30. DOI: 10.2527/1999.77113022x
Martos N, Ayala I. Determinación de los niveles plasmáticos de cortisol en diferentes patologías de los équidos. An Vet Murcia. 2003;19:129-40. https://revistas.um.es/ analesvet/article/view/16971/16341
Peeters M, Closson C, Beckers JF, Vandenheede M. Rider and Horse Salivary Cortisol Levels During Competition and Impact on Performance. J Equine Vet Sci. 2013;(33):155-60. https://orbi.uliege.be/ bitstream/2268/156579/1/Peeters%20et%20 al%202013.pdf
Bamford NJ, Potter SJ, Harris PA, Bailey SR. Effect of increased adiposity on insulin sensitivity and adipokine concentrations in horses and ponies fed a high fat diet, with or without a once daily high glycaemic meal. Equine Vet J. 2016;48(3):368-73. DOI: 10.1111/evj.12434
Evans DL, Harris RC, Snow DH. Correlation of racing performance with blood lactate and heart rate after exercise in Thoroughbred horses. EQUINE Vet J. 1993;25(5):441-5. DOI: 10.1111/j.2042-3306.1993.tb02987.x
Treiber KH, Boston RC, Kronfeld DS, Staniar WB, Harris PA. Insulin resistance and compensation in Thoroughbred weanlings adapted to high-glycemic meals. J Anim Sci. 2005;83:2357-64. DOI: 10.2527/2005.83102357x
Hoffman RM, Boston RC, Stefanovski D, Kronfeld DS, Harris PA. Obesity and diet affect glucose dynamics and insulin sensitivity in Thoroughbred geldings. J Anim Sci. 2003;81:2333- 42. DOI:10.2527/2003.8192333x
Stanley CC, Williams CC, Jenny BF, Fernandez JM, Bateman HG, Nipper W a, et al. Effects of feeding milk replacer once versus twice daily on glucose metabolism in Holstein and Jersey calves. J Dairy Sci. 2002; 85:2335-43. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(02)74313-0
Karikoski NP, McGowan CM, Singer ER, Asplin KE, Tulamo RM, Patterson-Kane JC. Pathology of Natural Cases of Equine Endocrinopathic Laminitis Associated With Hyperinsulinemia. Vet Pathol. 2015; 52(5):945- 56. DOI: 10.1177/0300985814549212
Welch S, Gebhart SSP, Bergman RN, Phillips LS. Minimal Model Analysis of Intravenous Glucose Tolerance Test-Derived Insulin Sensitivity in Diabetic Subjects. J Clin Endocrinol Metab. 1990; 71(6):1508-18. https://doi.org/10.1210/ jcem-71-6-1508
Anderson RA. Chromium as an essentiel nutrient for humans. Regul Toxicol Pharmacol. 1997;26:35-41. DOI: 10.1006/rtph.1997.1136
Holdsworth ES, Neville E. Effects of extracts of high- and low-chromium brewer’s yeast on metabolism of glucose by hepatocytes from rats fed on high- or low-Cr diets. Br J Nutr. 1990;63:623-30. DOI: https://doi.org/10.1079/ BJN19900148