ALFA. Revista de
Investigación en Ciencias Agronómicas y Veterinarias
Enero-abril 2024 / Volumen 8, Número 22
ISSN: 2664-0902 / ISSN-L: 2664-0902
https://revistaalfa.org
pp. 164 – 175
Efecto antitóxico de Aloe vera
L. frente al piroxicam en Allium cepa L
Antitoxic effect of Aloe vera L. against piroxicam in Allium cepa L
Efeito antitoxico de Aloe vera L. contra
piroxicam em Allium cepa L
Luis Gonzales-Llontop1
luis.gonzales@untrm.edu.pe
https://orcid.org/0000-0001-7944-2642
Mariel Chotón-Calvo1
mariel.choton@untrm.edu.pe
https://orcid.org/0000-0001-6870-9268
Julio
Chico-Ruiz2
jchico@unitru.edu.pe
https://orcid.org/0000-0002-7287-321X
Luisa Reyes Rodríguez1
karina.reyes@untrm.edu.pe
https://orcid.org/0000-0003-2719-5832
Marcela Saldaña Miranda3
marcela.saldana@unj.edu.pe
https://orcid.org/0000-0001-9457-5697
1Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza de
Amazonas. Laboratorio de Biología. Chachapoyas, Perú
2Universidad Nacional de Trujillo, Laboratorio de
Fisiología Vegetal. Trujillo, Perú
3Universidad Nacional de Jaén, Laboratorio de Biología.
Jaén, Perú
Artículo recibido 30 de noviembre
2023 | Aceptado 20 de diciembre 2023 | Publicado 20 de enero 2024
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https://doi.org/10.33996/revistaalfa.v8i22.256
RESUMEN
En la presente
investigación se evaluó el efecto antitóxico de Aloe vera L. frente al
piroxicam en Allium cepa L. bajo un diseño experimental completamente
aleatorizado. Se formaron un grupo testigo y tres grupos experimentales. El
efecto toxicológico del piroxicam 1% se midió a través del Registro Mitótico
(R.M.). El grupo Problema 1 mostró el mayor valor de R.M. (12.5±0.37%) al
sumergir las raíces en A. vera L. El grupo Problema 2 presentó el menor valor
(7.6±0.24%) al exponer las raíces al piroxicam. En el grupo Problema 3, donde
las raíces se expusieron al piroxicam y a. vera L., el valor del R.M.
(9.4±0.19%) no fue significativamente diferente al grupo testigo (p>0.05).
Aloe vera L. demostró un efecto antitóxico frente a la exposición de las raíces
de Allium cepa L. al piroxicam al 1%.
Palabras clave: Genotoxicidad;
Anomalías cromosómicas; Piroxicam; Aloe vera L.; Allium cepa L
ABSTRACT
The present research
evaluated the antitoxic effect of Aloe vera L. against piroxicam in Allium cepa
L. under a completely randomized experimental design. One control group and
three experimental groups were formed. The toxicological effect of 1% piroxicam
was measured through the Mitotic Registry (M.R.). Problem Group 1 showed the
highest M.R. value (12.5±0.37%) when roots were immersed in A. vera L. Problem
Group 2 presented the lowest value (7.6±0.24%) when roots were exposed to
piroxicam. In Problem Group 3, where roots were exposed to both piroxicam and
A. vera L., the M.R. value (9.4±0.19%) was not significantly different from the
control group (p>0.05). Aloe vero L. demonstrated an antitoxic effect
against the exposure of Allium cepa L. roots to 1% piroxicam.
Key words: Genotoxicity;
Chromosomal abnormalities; Piroxicam; Aloe vera L.; Allium cepa L
RESUMO
Neste estudo de
pesquisa, a eficácia antitóxica do Aloe vera L. foi avaliada em face do
piroxicam em relação à Allium cepa L., seguindo um design experimental
completamente aleatório. Foram formados um grupo controle e três grupos
experimentais. A eficácia tóxica do piroxicam a 1% foi medida através do
Registro Mitótico (RM). O grupo Problema 1 apresentou o maior valor de RM (12,5
± 0,37%) ao imersão as raízes em Aloe vera L. O grupo Problema 2 apresentou o
menor valor (7,6 ± 0,24%) ao expô-las as raízes ao piroxicam. No grupo Problema
3, onde as raízes foram expostas ao piroxicam e ao Aloe vera L., o valor do RM
(9,4 ± 0,19%) não apresentou diferença significativa em relação ao grupo
controle (p > 0,05). O Aloe vera L. demonstrou efeito antitóxico em face da
exposição das raízes de Allium cepa L. ao piroxicam a 1%.
Palavras-Chave: Genotoxicidade;
Anomalias cromossómicas; Piroxicam; Aloe vera L.; Allium cepa L
INTRODUCCIÓN
La toxicidad es un dilema mundial de toxicología
ambiental y definitivamente afecta la homeostasis del ser humano. Cada época
del año, una variedad de sustancias químicas inventadas por el hombre viene
invadiendo los mercados de consumo humano destacando las áreas alimenticias,
agrícolas, farmacéuticas y otras. De ellas se desconoce sus efectos secundarios
los cuales producirían consecuencias indeseables e irreversibles agravando las
enfermedades crónicas humanas en el Perú y en el mundo. Está comprobado que
diversos productos químicos como herbicidas, plaguicidas, insecticidas,
saborizantes de alimentos, gaseosas, fármacos, entre otros. son altamente
tóxicos en células vegetales y animales (1,2).
En los países en vías de desarrollo las sustancias
químicas farmacológicas de venta libre y por prescripción médica como los
antinflamatorios no esteroides (AINES) como el diclofenaco, ibuprofeno,
naproxeno y los antibióticos están listas para ser consumidos por la población
debido a las distintas enfermedades que padecen. Los efectos secundarios que
ocasionan estos fármacos son ignorados por la población quizá por la confianza
depositada en los galenos y por el afán de curarse a corto plazo. Estos
fármacos al tratar de sofocar una patología (3) estarían incrementando el
deterioro de otros órganos del cuerpo humano como es el caso de la
ulcerogénesis y la gastritis crónica al admitir su consumo (4).
Por otro lado, la utilización de plantas medicinales
está asociado a las culturas humanas desde los tiempos prehistóricos. El
consumo de plantas medicinales que por sus propiedades curativas y/o
preventivas es una práctica habitual en aproximadamente el 79% de la
poblacional mundial, otorgando la alternativa de descubrir agentes fitoquímicos
con eficaz acción biológica antitóxica. Dentro de estos compuestos, se
considera que las plantas medicinales son una de las mayores fuentes de agentes
antioxidantes y antiinflamatorios naturales entre los que destaca los ácidos
orgánicos esenciales (5).
Es posible trastocar este ambiente contaminado,
producido por una gama de sustancias químicas diferentes la cuales vienen
promoviendo múltiples enfermedades a la humanidad. Los ensayos biológicos con
la aplicación de terapias naturales (uso de la medicina alternativa) sobre
agentes biosensibles como el test de cebolla podrían otorgar evidencias de
contravenir el efecto de productos toxicológicos en el paciente a corto,
mediano y/o a largo plazo (6).
Es importante a través de la investigación, rescatar
las virtudes curativas que tienen las plantas medicinales como Aloe vera para
luego plantear alternativas de prevención a la humanidad. Pues A. vera es una
planta que posee agentes antioxidantes, antiinflamatorios y regenerativos la
que la convierten en una gran opción como agente bioreparador del ADN lesionado
por la acción de productos tóxicos (7).
Ante estas preocupaciones, se propone el objetivo de
evaluar el efecto antitóxico de Aloe
vera L. frente al piroxicam en A.
cepa L.
MATERIALES Y MÉTODOS
Material vegetal
Las hojas de A.
vera L. (sábila) fueron recolectadas en la provincia de Chachapoyas,
Departamento de Amazonas. La confirmación de la especie fue confirmada por un
curador de la Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza de Amazonas.
Una vez recolectadas se lavaron con agua e hipoclorito de sodio; luego se
secaron y guardaron en bolsas de papel oscuro. Las hojas de sábila fueron
colocadas en agua en depósitos plásticos por 24 horas para eliminar todo
material no utilizable (acíbar). Se cortaron y eliminaron las espinas luego se
licuó el gel. Se dejó enfriar y se decantó, separando la resina y se filtró. Se
dejó evaporar a calor suave no mayor a 35ºC. Se dejó reposar dos semanas a
temperatura ambiente hasta la formación de un gel moderadamente diluido. Se
lavó con acetato de etilo al 10% (Laboratorios QUILAB) para eliminar las
impurezas y se dejó secar evitando la humedad. El producto obtenido fue
refrigerado a 10ºC en un frasco ámbar rotulado. Se aplicó 20 uL (2 gotas) de A. vera L. para cada tratamiento.
Tratamiento de las raicillas de Allium cepa L.
Se trabajó con 20 bulbos de A. cepa L., que permanecieron en agua constantemente renovada
con permanente oxigenación, en oscuridad y a temperatura de 20 ± 22°C. Luego 72
horas después se eligieron las radículas con longitudes medias de 3.0 cm con el
objetivo de proveernos muestras con un ciclo celular permanente.
Estudio experimental
La investigación se desarrolló bajo un diseño
experimental completamente aleatorizado. Se crearon cuatro grupos, uno grupo
testigo y tres grupos experimentales denominados Problema 1, Problema 2 y
Problema 3, cada uno con cinco repeticiones consistente en ese mismo número de
búlbos de cebolla. Se realizó una
medición antes y otra después de aplicarse el estímulo a los tres grupos
experimentales (8).
Se determinó la duración de la ola celular binucleada
de A. cepa L. usando cafeína
0,1%. Se tomó como hora cero la exposición de las raicillas de A. cepa L. en cafeína 0,1 % para
todos los procesos. Los sistemas fueron sumergidos en una solución de cafeína
(1, 3, 7 – trimetilxantina) 0,1% que se usó como marcador celular con la
finalidad de obtener una subpoblación de células binucleadas (9).
En el grupo testigo se sumergieron las radículas de A.
cepa L. por 13 horas en agua pura. En el grupo problema 1, las raicillas de A. cepa L. fueron introducidas entre
la cuarta hasta la octava hora con A.
vera L., tomando la fase temprana y terminal de la duplicación. También
iniciada la novena hora hasta la décima primera hora se introdujo en agua pura
para su restauración. En el grupo problema 2, los ápices de A. cepa L. fueron
sometidos a partir de la cuarta hora hasta la octava con piroxicam 1%. Luego a
partir de la novena hora hasta la décima primera hora las raicillas
permanecieron en agua pura. En el grupo problema 3, las raicillas de A. cepa L. fueron sumergidas a partir
de la cuarta hasta la octava hora en una mezcla de piroxicam 1% más 20um de A. vera L. También iniciando la
novena hora hasta la décima primera las radículas se metieron en agua pura.
Terminada la experiencia con el fármaco y A. vera, las raicillas se cortaron, continuándose con el proceso
de Tjio y Leván que consistió en la fijación de las raicillas en Carnoy,
coloración con orceína acética clorhídrica 1%, visualización en microscopio a
400x y 1000x y tomas fotográficas de las etapas celulares estudiadas.
Estimación de la toxicidad del piroxicam
El efecto toxicológico (citotoxicidad) del piroxicam
1% se midió valorando el Registro Mitótico (RM) (10) y el promedio de longitud
de raicillas alteradas. El efecto genotóxico se evaluó a través de la
proporción de alteraciones cromosómicas (genotoxicidad) de dos tipos:
clastogénicas y aneugénicas (11,12).
Análisis estadístico
Los resultados fueron analizados mediante una prueba
de distribución libre denominada U de Mann–Withney, el nivel de significación
se estableció para p<0.05. Se utilizó para este fin el programa estadístico
SSPS versión 27,0. Finalmente se estimaron las medidas de tendencia central
(media) y de dispersión (varianza, desviación estándar) previa transformación
arco seno de los porcentajes originales.
RESULTADOS
Rangos de citotoxicidad del piroxicam
Los resultados de la
evaluación de los niveles de toxicidad del piroxcan utilizando el modelo de
test de cebolla son mostrados en la Tabla 1 mediante los rangos de
citotoxicidad en los registros interfásico (RI) y mitótico (RM), así como en
registro profásico (RP), metafásico (RMe), anafásico (RA) y telofásico (RT) de Allium cepa L.
El Registro Mitótico (R.M.) de las células
radiculares de A. cepa L.
indica el porcentaje de células que participan en la reproducción celular. En
este sentido, el mayor valor se observa en el grupo Problema 1 en el cual las
raicillas de A. cepa L. fueron
introducidas entre la cuarta hasta la octava hora con A. vera L. Sin embargo, el menor valor del R.M. se observó en el
grupo Problema 2, en el cual las raicillas de A. cepa L fueron expuestas a concentraciones de 1% de piroxicam,
lo que puede sugerir una disminución de la actividad celular reproductiva a
expensas del farmaco. En cambio, cuando las raicillas de A. cepa L. fueron sometidas a la
acción conjunta de piroxicam y A. vera
L. (Problema 3) el valor del R.M. no fue distinto significativamente
(p>0.05) en comparación con el grupo testigo (Tabla 1).
Tabla 1. Rangos de citotoxicidad del piroxicam en Allium cepa L.
|
Grupos |
R.I. |
R.M. |
R.P. |
R.Me |
R.A. |
R.T. |
|
Testigo |
88,9 |
11,1±0,34* |
79,2 |
8,1 |
6,9 |
5,8 |
|
Problema 1 |
87,5 |
12,5±0,37* |
77,3 |
8,4 |
6,8 |
7,5 |
|
Problema 2 |
92,4 |
7,6±0,24* |
82,5 |
7,7 |
6,1 |
3,7 |
|
Problema 3 |
90,6 |
9,4±0,19 |
80,8 |
8,0 |
6,6 |
4,6 |
* P<0,05 respecto al
testigo
RI= registro interfásico, RM= registro mitótico, RP= registro profásico,
RMe= registro metafásico,
RA= registro anafásico, RT= registro telofásico.
Los registros se expresan en proporciones (%).
Se estimaron 2000 células de A. cepa L. en cada procedimiento.
Promedios de longitud de
radículas de Allium cepa L. antes y después de los procesamientos
La obtención de los
promedios de longitud de las raicillas de cebolla permitió calcular los grados
de citoxicidad del piroxicam 1%. En la tabla 2 se muestran la disimilitud de
medias de longitud de las radículas de Allium cepa L. registrado antes
(A) y (D) después del procesamiento de los grupos.
Los productos de la
longitud de los ápices bulbares subordinados al piroxicam 1% (transcurridas las
14 horas que perduró el ciclo reproductivo de A. cepa L. probaron la acción
de restricción celular observada en el piroxicam 1%, al percibir el detenido
desarrollo en longitud de las radículas en contraste con los conjuntos: testigo
y problema 3, en este último se aplicó una dosis de piroxicam al 1% más 20um de
sábila observándose que aumentaron su tamaño sin dificultad.
Tabla 2. Disimilitud de promedios de longitud de radículas de Allium cepa L.
antes y después de los procesamientos
|
Promedio
de longitud de raicillas |
||||||||||
|
Grupos |
T1 |
T2 |
T3 |
T4 |
T5 |
|||||
|
A |
D |
A |
D |
A |
D |
A |
D |
A |
D |
|
|
Testigo |
2,4 |
3,3 |
2,2 |
3 |
3,2 |
4 |
3,2 |
4 |
2,9 |
3,6 |
|
Problema 1 |
2,5 |
3,5 |
2,4 |
3,4 |
3,3 |
4,2 |
3,3 |
4,5 |
3 |
3,9 |
|
Problema 2 |
2,9 |
3 |
3 |
3 |
2,7 |
2,7 |
2,7 |
2,8 |
2,5 |
2,6 |
|
Problema 3 |
2,6 |
3,5 |
2,6 |
3,4 |
2,8 |
3,5 |
2,6 |
3,4 |
2,4 |
3,3 |
Leyenda: A: antes; D: después
Anomalías cromosómicas inducidas por piroxicam 1% en radículas de Allium cepa L.
Las aberraciones
cromosómicas inducidas por piroxicam 1% en radículas de
Allium cepa L. permitió dilucidar los tipos de alteraciones
genéticas que se hallaron y fueron clastogénicas y aneugénicas.
En la Tabla 3 se observan
los porcentajes de anomalías cromosómicas tipo clastogénicas: puentes
cromosómicos (1,9%), cromosoma aislado (0,6%); aneugénicas: cromosoma
espiralado (0,7%), y cromosoma pegajoso (0,9%). Sin aberraciones cromosómicas
(95,9%) halladas en el período celular en radículas de A. cepa con sus escalas
(medidas) centrales y de dispersión.
Tabla 3: Promedio de
anomalías cromosómicas inducidas por piroxicam 1% en radículas de Allium cepa.
L.
|
Anomalías cromosómicas |
|||||
|
|
Clastogénicas |
Aneugénicas |
|
||
|
|
PC |
CA |
CE |
CP |
SA |
|
Células en anafase |
*1,9 |
*0,6 |
*0,7 |
*0,9 |
95,9 |
|
Varianza |
0,08 |
0,11 |
0,09 |
0,18 |
0,3 |
|
Error standard |
0,04 |
0,03 |
0,17 |
0,06 |
0,1 |
Leyenda: PC: puente
cromosómico, CA: cromosoma aislado, CE: cromosoma espiralado, CP: cromosoma
pegajoso, SA: sin aberraciones.
Se valoraron 2000 células de A. cepa L. por proceso.
Anomalías cromosómicas
observadas en el grupo donde se aplicó piroxicam 1% más Aloe vera L. en radículas de Allium cepa L.
El efecto inhibidor del gel de Aloe
vera L. sobre las anormalidades cromosómicas inducidas por piroxicam 1%
en las células embrionarias de ápice de A.
cepa L. quedó demostrado al disminuir el promedio de anomalías
cromosómicas como sigue: tipo
clastogénicas: puentes cromosómicos (0,5%), cromosoma aislado (0%);
aneugénicas: cromosoma espiralado (0%), y cromosoma pegajoso (0,2%). Sin
aberraciones cromosómicas (99,3%) halladas en el tiempo celular de radículas de
A. cepa con
sus escalas (medidas) centrales y de dispersión Tabla 4.
Tabla 4: Promedio de
anomalías cromosómicas observadas en el grupo donde se aplicó piroxicam 1% más
Aloe vera L. en radículas de Allium cepa. L.
|
Anomalías cromosómicas |
|||||
|
|
Clastogénicas |
Aneugénicas |
|
||
|
|
PC |
CA |
CE |
CP |
SA |
|
Células en anafase |
*0,5 |
- |
- |
*0,2 |
99,3 |
|
Varianza |
0,13 |
- |
- |
0,03 |
0,3 |
|
Error standard |
0,04 |
- |
- |
0,09 |
0,1 |
Leyenda: PC: puente
cromosómico, CA: cromosoma aislado, CE: cromosoma espiralado, CP: cromosoma
pegajoso, SA: sin aberraciones.
En la Figura 1 se observan células embrionarias
saludables de Allium cepa L. en
etapa de interface en el resto de las figuras se muestran las anomalías
cromosómicas producto de la exposición de las radículas
de Allium cepa. L. al piroxicam al 1%.
Figura 1. Células embrionarias saludables de Allium cepa L. en etapa de interface
Figura 2. Célula de radículas de Allium
cepa L. donde se observan puentes cromosómicos inducidos por piroxicam
1% (1000X).
Figura 3. Célula de radículas de Allium
cepa L. donde se observan cromosomas aislados inducidos por acción del
piroxicam 1% (1000X).
Figura 4. Célula de radículas de Allium
cepa L. donde se observan cromosomas espiralados por actividad del
piroxicam 1% (1000X).
Figura 5. Células de raicillas de Allium
cepa L. donde se observan cromosomas Pegajosos por efecto del piroxicam
1% (1000X).
DISCUSIÓN
En la Tabla 1 se percibe que el Registro
Mitótico (R.M.) de las células radiculares de A. cepa L. (testigo) fue 11.1%,
indicando esta estimación que, por cada 100 células, 11 de ellas participaron
en la reproducción celular. Las tabulaciones de menor cuantía señalan un
elevado nivel de toxicológico del piroxicam 1% perjudicando cualitativa y
cuantitativamente a las células radiculares al alterar los diversos procesos
bioquímicos de regulación celular (13).
Si colacionamos este producto del Registro
Mitótico (11,1%) del conjunto testigo con el conjunto problema 2 (7,6%),
presenciamos que el piroxicam 1% obstaculiza en un 68,4% la llegada del lote
celular a reproducirse, comprobando una elevada toxicidad del piroxicam en
análisis. El decremento del RM se debe a que las radículas de cebolla resisten
una actividad toxicológica desenfrenada del piroxicam 1%, acontecimiento que se
verifica en la discontinuidad del desarrollo lineal de los ápices estudiado en
el conjunto problema 1 (tabla 3) (fig. B). El RM del conjunto problema 3 señala
que los lotes celulares se rehabilitaron y recobraron su actividad en el ciclo
celular al ser inducidos por los componentes fitoactivos que tiene Aloe vera L. “sábila” en un 9,4%
referente al Registro Mitótico del conjunto problema 2 (7,6%), conjeturando que
los complejos proteicos que monitorean todo ciclo celular fueron encendidos
(14).
Se percibe en la tabla 1 que los valores de
los registros de fases son distintos, advirtiendo que el registro profásico
(RP) exhibe valores incrementados respecto a los conjuntos testigo, problema 1
y problema 3. La razón sería por la actividad reprimida que fue ejecutada por
el piroxicam 1%. El piroxicam induce un incremento de la valoración del RP
(82,5%), presentando una alta división celular, en contraste con el testigo de
79,2%. Entonces el piroxicam 1% intervendría desfosforilando la membrana
nuclear, sucesos claves en el paso de la profase a la metafase (15).
En la Tabla 2 y en la Tabla 3 se percibe que
el grupo testigo mostró un desarrollo saludable del largo de sus radículas de Allium cepa L. que se utilizó como
modelo de contrastación con los productos de los otros procedimientos. Los
productos de largura de los ápices bulbares subordinados al piroxicam 1%
(transcurridas las 14 horas que perduró el ciclo reproductivo de A. cepa L.) probaron la acción de
restricción o de freno celular observada en el piroxicam 1%, al percibir el
detenido desarrollo en largura de las radículas en contraste con los conjuntos:
testigo y problema 3 (que obtuvo una dosis de piroxicam 1% más 20um de sábila)
que aumentaron sin dificultad. El tejido meristemático en progreso posiblemente
frenó su avance (se observa en la Figura 2 y Figura 3) por impacto del
piroxicam 1%. Probablemente se metieron
en un tiempo de adormecimiento celular al hallar al conjunto celular en una
situación hostil para avanzar con su progreso longitudinal. Compartimos este
hallazgo con Saetama y colaboradores (16) quienes usando ibuprofeno a una
concentración de 1 y 20 mgL-1 sobre la radícula e hipocotilo de Allium schoenoprasum L. (cebollín)
encontraron que la longitud de estas 2 estructuras vegetales había disminuido.
En otro estudio (17) se descubrió que la radícula de Allium schoenoprasum L. (cebollín) sometida a una dilución de
ibuprofeno se detuvo su crecimiento en largura.
En las dilataciones de A. cepa L. donde sus radículas se empaparon con piroxicam 1%
(Tabla 3) se palpó microscópicamente (figura 1) un lote celular en etapa de
interface. La inspección del ciclo reproductivo de A. cepa L. habría sido alterado durante el metabolismo
(transcripción) de las ciclinas y de las quinasas. Cuando se afecta la
estructura molecular del grupo completo de genes de un organismo vivo, da como
producto células trastornadas esto provoca una reacción celular interna
frenando el ciclo. Muchos actores ambientales como sustancias químicas y otros
mutágenos perjudicarían al material genético como al grupo microtúbular (18)
esencial para que se suscite la mitosis.
En las Figuras 2 y 3 se evidencian dos
situaciones de anomalías cromosómicas clastogénicas: el puente cromosómico y el
cromosoma aislado; aquí el cromosoma ha padecido un quiebre de su organización
física promovida por el piroxicam 1%. La fragmentación del material hereditario
demostró una elevada toxicología por parte del piroxicam. En la tabla 4 se
indica que los puentes cromosómicos se hallaron en un 1,9% en A. cepa L.;
cotejamos este producto descubierto por otros investigadores quienes usando
dexametasona 0,1% e ibuprofeno 0,1% sus porcentajes hallados fueron de 3,7% y
5,9% respectivamente. Manifestamos que el poder genotóxico de los AINES
mencionados y ensayados está propenso a provocar deterioro cromosómico en los
grupos celulares con quienes interactúan. Sin embargo, se rescata el aporte de Aloe vera L. “sábila” a través de sus
fitoconstituyentes quienes estimularon la maquinaria de reparación celular de
las células radiculares encontrándose disminuido el daño en un 0,5% de puentes
cromosómicos verificándose su reacción bioprotectora y antitóxica que podría
poseer esta planta (19). Unos estudiosos (20) señalaron que la acción
protectora y regeneradora de la sábila se debería a los azúcares y sustancias
fenólicas que esta planta contiene. Algunos estudios (21, 22) aseveran que el
uso de la sábila posee una actividad antioxidante, antinflamatoria,
anticancerígena y bioprotectora debido a los flavonoides, antraquinonas,
emodina y otras sustancias que contiene su gel. Por estas cualidades
medicinales que posee Aloe vera
L. “sábila” en la actualidad se está tratando de masificar su producción y se
ha recurrido a la poliploidía con resultados prometedores (23). Complementamos
afirmando que Aloe vera L. en
su aplicación en animales con patologías micóticas no se detectaron efectos
secundarios (24).
CONCLUSIONES
En las condiciones experimentales desarrolladas en esta investigación Aloe vera L. evidenció efecto
antitóxico frente a la exposición de las raicillas de Allium cepa L. al piroxicam al 1%, demostrado en el valor
alcanzado del registro mitótico 9,4%, una disminución del registro profásico de
80,8% e incremento de los registros metafásico (8,0%), anafásico (6,6%) y
telofásico (4,6%) así como un permanente crecimiento radicular. El piroxicam 1% presentó un efecto citotóxico
en un test de A. cepa L. al presentar un registro mitótico de 7,6%, un
aumento del registro profásico de 82,5% y reducción de los registros metafásico
(7,7%), anafásico (6,1%) y telofásico (3,7%) así como una inhibición del
crecimiento radicular.
CONFLICTO DE INTERESES.
Los autores declaran que no existe conflicto de
intereses para la publicación del presente artículo científico.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFIA
1. Gonzales L, Chotón M, Chico J. Efecto citotóxico y
genotóxico de la dexametasona e ibuprofeno en radículas de Allium cepa L. “cebolla. Revista
Manglar. 2020; 17 (3): 227-232. http://dx.doi.org/10.17268/manglar.2020.033
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